Ancient DNA challenges prevailing interpretations of the Pompeii plaster casts
Discovery Future: Scientists FINALLY Sequenced The DNA of Pompeii’s Victims and It Changes Everything!
https://www.youtube.com/watch?v=bx4xucUkyco
Ancient DNA challenges prevailing interpretations of the Pompeii plaster casts
źródło: https://www.cell.com/current-biology/fulltext/S0960-9822(24)01361-7
Results and discussion
DNA preservation and uniparentally inherited markers
Cast number | Genetic ID | Discovery place | SNPs of 1,240,000 set covered | Average coverage on 1,240,000 SNP set | Genetic sex | Quantifiler Trio Y target | Y haplogroup | mtDNA haplogroup | C-to-T at 5′ end (non-UDG library) | C-to-T at 5′ end (UDG library) | ANGSD X chromosome contamination estimate: Number of SNPs | ANGSD X chromosome contamination estimate: Mean | ANGSD X chromosome contamination estimate: C.I. |
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
22 | I3690 | House of the Cryptoporticus | 93,727 | 0.09 | M | M | J2b2a1 | N1b1a1 | 0.3 | 0.09 | 19 | N/A | N/A |
25 | I3682 | Villa of Mysteries | 53,739 | 0.047 | M | N/Aa | E1b1b1b1b | H | N/A | 0.1 | 0 | N/A | N/A |
50 | I3683 | House of the Golden Bracelet | N/A | N/A | N/A | M | N/A | H1h1 | 0.23 | N/A | N/A | N/A | N/A |
51 | I3686 | House of the Golden Bracelet | 62,030 | 0.054 | M | M | J2a1a4b | T2c1c | 0.15 | 0.04 | 4 | N/A | N/A |
52 | I3685 | House of the Golden Bracelet | 364,533 | 0.437 | M | M | T1a1a1b2b2b1a | U1a1 | 0.2 | 0.02 | 350 | 0.0187 | 0–0.039 |
53 | I3691 | House of the Golden Bracelet | 286,023 | 0.309 | M | M | E1b1b | H | 0.24 | 0.04 | 208 | 0.0086 | 0–0.026 |
The plaster cast individuals represent an ancestrally diverse population
Demographic and phenotypic characteristics
Combined genetic and osteological findings contradict some of the established popular narratives
House of the golden bracelet
House of the cryptoporticus
Villa of the mysteries
Resource availability
Lead contact
Materials availability
Data and code availability
Acknowledgments
Author contributions
Declaration of interests
STAR★Methods
Key resources table
REAGENT or RESOURCE | SOURCE | IDENTIFIER |
---|---|---|
Biological samples | ||
Ancient skeletal element | This study | I3678; Cast Number 15 |
Ancient skeletal element | This study | I3679; Cast Number 1 |
Ancient skeletal element | This study | I3680; Cast Number 79 |
Ancient skeletal element | This study | I3681; Cast Number 20 |
Ancient skeletal element | This study | I3682; Cast Number 25 |
Ancient skeletal element | This study | I3683; Cast Number 50 |
Ancient skeletal element | This study | I3684; Cast Number 21 |
Ancient skeletal element | This study | I3685; Cast Number 52 |
Ancient skeletal element | This study | I3686; Cast Number 51 |
Ancient skeletal element | This study | I3687; Cast Number 14 |
Ancient skeletal element | This study | I3688; Cast Number 54 |
Ancient skeletal element | This study | I3689; Cast Number 62 |
Ancient skeletal element | This study | I3690; Cast Number 22 |
Ancient skeletal element | This study | I3691; Cast Number 53 |
Chemicals, peptides, and recombinant proteins | ||
Distilled Water DNA free, UltraPure | Thermo Fisher Scientific | Cat# 10977035 |
0.5 M EDTA pH 8.0 | Thermo Fisher Scientific | Cat# AM9261 |
Proteinase K | Thermo Fisher Scientific | Cat# AM2548 |
Isopropanol | Sigma Aldrich | Cat# I9516 |
Guanidine hydrochloride | Sigma Aldrich | Cat# G4505 |
Sodium Acetate Solution (3 M), pH 5.2 | Thermo Fisher Scientific | Cat# R1181 |
Tween 20 | Sigma Aldrich | Cat# P2287 |
Buffer PE | Qiagen | Cat# 19065 |
Buffer PB | Qiagen | Cat# 19066 |
Tris-EDTA buffer solution | Sigma Aldrich | Cat# 93283 |
UltraPure 0.5M EDTA, pH 8.0 | Thermo Fisher Scientific | Cat# 15575020 |
NEB Buffer #2 10x | New England Biolabs | Cat# B7002 |
ATP 10 mM | New England Biolabs | Cat# P0756 |
BSA 20 mg/mL | New England Biolabs | Cat# B9000 |
dNTP Mix | Euroclone | Cat# EMR415001 |
USER enzyme | New England Biolabs | Cat# M5505 |
Uracil Glycosylase inhibitor (UGI) | New England Biolabs | Cat# M0281 |
T4 Polynucleotide Kinase | New England Biolabs | Cat# M0201 |
T4 DNA Polymerase | New England Biolabs | Cat# M0203 |
Bst DNA Polymerase | New England Biolabs | Cat# M0537L |
Quick Ligase | New England Biolabs | Cat# M2200 |
PfuTurbo Cx Hotstart DNA Polymerase | Agilent Technologies | Cat# 600414 |
Ethanol | Merck | Cat# 1009831000 |
Agilent D1000 ScreenTapes | Agilent Technologies | Cat# 5067-5582 |
Agilent D1000 Reagents | Agilent Technologies | Cat# 5067-5583 |
Agilent HS Screen Tapes | Agilent Technologies | Cat# 5067-5584 |
Agilent HS Reagents | Agilent Technologies | Cat# 5067-5585 |
Agarose | Lonza | Cat# 50004 |
Expand Long Range dNTPack | Roche | Cat# 4829034001 |
Quick Blunting Kit | New England BioLaba | Cat# E1201 |
AccuPrime Pfx DNA Polymerase | Thermo Fisher Scientific | Cat# 12344024 |
Herculase II Fusion DNA Polymerase | Agilent Technologies | Cat# 600679 |
Sodium hydroxide Pellets | Fisher Scientific | Cat# 10306200 |
Dynabeads M-270 Streptavidin | Thermo Fisher Scientific | Cat# 65305 |
AmpliTaq Gold DNA Polymerase with Gold Buffer and MgCl2 | Thermo Fisher Scientific | Cat# 4311806 |
Agilent aCGH Hybridization Kit | Agilent | Cat# 5188-5220 |
5M NaCl | Sigma Aldrich | Cat# S5150 |
1M NaOH | Sigma Aldrich | Cat# 71463 |
1 M Tris-HCl pH 8.0 | Sigma Aldrich | Cat# AM9856 |
Quantifiler Trio DNA Quantification Kit | Thermo Fisher Scientific | Cat# 4482910 |
Cot-1 DNA | Invitrogen | Cat# 15279011 |
Dynabeads MyOne Streptavidin T1 | Thermo Fisher Scientific | Cat# 65602 |
Salmon sperm DNA | Thermo Fisher Scientific | Cat# 15632-011 |
Denhardt’s solution | Sigma-Aldrich | Cat# D9905-5Ml |
20x SCC Buffer | Thermo Fisher Scientific | Cat# AM9770 |
2x HI-RPM hybridization buffer | Agilent | Cat# 5118-5380 |
Critical commercial assays | ||
MinElute PCR Purification Kit | QIAGEN | Cat# 28006 |
QIAquick PCR Purification Kit | QIAGEN | Cat# 28104 |
Qubit dsDNA HS Assay Kit, 500 assays | Thermo Fisher Scientific | Cat# Q32854 |
High Pure Extender Assembly from the Roche High Pure Viral Nucleic Acid Large Volume Kit,40 reactions | Roche | Cat# 5114403001 |
QIAquick Nucleotide Removal Kit | Quiagen | Cat# 28304 |
MiSeq Reagent Kit v3 (150 cycle) | Illumina | Cat# MS-102-3001 |
NextSeq 500/550 High Output Kit v2.5 | Illumina | Cat# 20024906 |
Deposited data | ||
Sequencing data from 5 newly reported ancient individuals | This study | ENA: PRJEB74999 |
Genotype data from 5 ancient newly reported individuals | This study | https://reich.hms.harvard.edu/datasets |
Oligonucleotides | ||
IS1_adapter.P5: A∗C∗A∗C∗TCTTTCCCTACACGACG CTCTTCCG∗A∗T∗C∗T |
Meyer and Kircher47 | Merck |
IS2_adapter.P7: G∗T∗G∗A∗CTGGAGTTCAGACGTG TGCTCTTCCG∗A∗T∗C∗T |
Meyer and Kircher47 | Merck |
IS3_adapter.P5+P7: A∗G∗A∗T∗CGGAA∗G∗A∗G∗C | Meyer and Kircher47 | Merck |
IS6: CAAGCAGAAGACGGCATACGA | Meyer and Kircher47 | Merck |
IS5: AATGATACGGCGACCACCGA | Meyer and Kircher47 | Merck |
Sol_iPCR-MPI: CAAGCAGAAGACGGCATACG AGAT∗∗∗∗∗∗∗∗GTGACTGGAGTTCAGACGTGT |
Kircher et al.48 | Merck |
P5_iPCR-LP: AATGATACGGCGACCACCGAGAT CTACAC∗∗∗∗∗∗∗∗ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTT |
Kircher et al.48 | Merck |
Bio-T: Biotin-TCAAGGACATCC∗G | Maricic et al.22 | Merck |
B: CGGATGTCCTT∗G | Maricic et al.22 | Merck |
BO1.P5.F: AATGATACGGCGACCACCGAGATCTA CACTCTTTCCCTACACGACGCTCTT CCGATCT-phosphate |
Maricic et al.22 | Merck |
BO2.P5.R: AGATCGGAAGAGCGTCGTGTAGGGA AAGAGTGTAGATCTCGGTGGTCGCCG TATCATT-phosphate |
Maricic et al.22 | Merck |
BO3.P7.part1.F: AGATCGGAAGAGCACACG TCTGAACTCCAGTCAC-phosphate |
Maricic et al.22 | Merck |
BO4.P7.part1.R: GTGACTGGAGTTCAGACG TGTGCTCTTCCGATCT-phosphate |
Maricic et al.22 | Merck |
BO5.P7.part2.F: ATCTCGTATGCCGTCTTC TGCTTG-phosphate |
Maricic et al.22 | Merck |
BO6.P7.part2.R: CAAGCAGAAGACGGCA TACGAGAT-phosphate |
Maricic et al.22 | Merck |
BO8.P5.part1.R:GTGTAGATCTCGGTGGTC GCCGTATCATT-Phosphate | Fu et al.49; Fu et al.50 | Sigma-Aldrich |
BO10.P5.part2.R:AGATCGGAAGAGCGTC GTGTAGGGAAAGAGTGT-phosphate |
Fu et al.49; Fu et al.50 | Sigma-Aldrich |
Sol_bridge_P5: AATGATACGGCGACCACCGA | Maricic et al.22 | Merck |
Sol_bridge_P7: CAAGCAGAAGACGGCATACGA | Maricic et al.22 | Merck |
LongR_mt1_For: GGCTTTCTCAACTTTTAAAGGATA | Meyer et al.51 | Merck |
LongR_mt1_Rev: TGTCCTGATCCAACATCGAG | Meyer et al.51 | Merck |
LongR_mt2_For: CCGTGCAAAGGTAGCATAATC | Meyer et al.51 | Merck |
LongR_mt2_Rev: TTACTTTTATTTGGAGTTGCACCA | Meyer et al.51 | Merck |
Probe for 1240K Panel | Haak et al.23; Mathieson et al.52 | N/A |
Software and algorithms | ||
EAGER version 1.92.55 | Peltzer et al.53 | https://github.com/apeltzer/EAGER-GUI |
CircularMapper version 1.0 | Peltzer et al.53 | https://github.com/apeltzer/CircularMapper/releases |
Dedup v0.12.07 | Peltzer et al.53 | https://github.com/apeltzer/DeDup |
bwa v. 0.7.17-r1188 | Li and Durbin54 | https://github.com/lh3/bwa |
mapDamage2.0 | Jónsson et al.55 | https://ginolhac.github.io/mapDamage/ |
contamMix | Fu et al.56 | N/A |
Haplogrep3 | Schönherr et al.57 | https://haplogrep.i-med.ac.at |
HID Real-Time PCR Analysis Software v1.2 | Thermo Fisher | A24664 |
SeqPrep 1.1 | https://github.com/jstjohn/SeqPrep | N/A |
Preseq | Daley and Smith58 | N/A |
ANGSD | Korneliussen et al.59 | N/A |
SAMTools | Li and Durbin54 | N/A |
EIGENSOFT (version 7.2.1). | https://github.com/DReichLab/EIG | N/A |
ADMIXTOOLS v.6.0 | https://github.com/dReichLab/AdmixTools | N/A |
KIN | Popli et al.60 | N/A |
BREADR | Rohrlach et al.61 | N/A |
sexDetERRmine | Lamnidis et al.62 | N/A |
ADMIXTURE | Alexander et al.63 | N/A |
hapROH | Ringbauer et al.28 | N/A |
Experimental model and subject details
Plaster casts
Sampled ancient individuals
Method details
Sampling of skeletal material and DNA extraction
DNA library preparation
Mitochondrial DNA capture and sequencing
Second mitochondrial DNA capture, autosomal capture and sequencing
Quantification and statistical analysis
Quantification and evaluation of DNA preservation
Processing of sequencing data
Population genetic and relatedness analysis
Prediction of phenotypic traits
Strontium, Carbon, and Oxygen Analysis
Supplemental information (5)
References
Geosciences. 2022; 12:275
Riv. di Stud. Pompeiani. 1998; 9:75-123
J. Volcanol. Geotherm. Res. 2003; 126:169-200
Pap. Br. Sch. Rome. 2021; 89:101-136
Biochem. Biophys. Res. Commun. 1998; 247:901-904
J. Exp. Zool. Pt. B. 2004; 302B:550-556
J. Cell. Physiol. 2004; 199:200-205
Turk. J. Biol. 2017; 41:640-648
Ann. Hum. Genet. 2009; 73:429-437
Croat. Med. J. 1999; 40:392-397
Nucleic Acids Res. 2002; 30, e16
Ital. J. Anat. Embryol. 2004; 109:105-114
J. Cell. Biochem. 2011; 112:363-364
J. Cell. Biochem. 2010; 111:1080-1081
J. Archaeol. Sci. Rep. 2023; 48, 103902
Sci. Rep. 2022; 12:6468
Science. 2019; 366:708-714
Nature. 2018; 555:197-203
L’Erma di Bretschneider, 2021
PLoS One. 2010; 5, e14004
Nature. 2015; 522:207-211
Science. 2022; 377, eabm4247
Eur. J. Hum. Genet. 2009; 17:820-830
PLoS One. 2011; 6, e16073
Hum. Biol. 2011; 83:39-53
Nat. Commun. 2021; 12:5425
Forensic Sci. Int. Genet. 2018; 35:123-135
Electa, 2003
Libreria dello Stato, 1953
Ann. Hum. Genet. 1998; 62:531-550
Am. J. Hum. Genet. 2000; 67:1251-1276
Chem. Geol. 2022; 587, 120624
Archaeol. Anthropol. Sci. 2020; 12:157
PLoS One. 2016; 11, e0147585
J. Archaeol. Sci. Rep. 2020; 31, 102285
Am. J. Phys. Anthropol. 2018; 166:837-850
Environ. Archaeol. 2023; 1-19
Data Brief. 2021; 38, 107421
J. Archaeol. Sci. Rep. 2022; 45, 103606
Sci. Data. 2023; 10:917
Cold Spring Harb. Protoc. 2010; 2010, pdb.prot5448
Nucleic Acids Res. 2012; 40:e3
Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2013; 110:2223-2227
Nature. 2015; 524:216-219
Nucleic Acids Res. 2007; 35, e97
Nature. 2015; 528:499-503
Genome Biol. 2016; 17:60
Bioinformatics. 2009; 25:1754-1760
Bioinformatics. 2013; 29:1682-1684
Curr. Biol. 2013; 23:553-559
Nucleic Acids Res. 2023; 51:W263-W268
Nat. Methods. 2013; 10:325-327
BMC Bioinformatics. 2014; 15:356
Genome Biol. 2023; 24:10
Preprint atbioRxiv. 2023;
Nat. Commun. 2018; 9:5018
Genome Res. 2009; 19:1655-1664
Mondadori Electra S.p.A, 2010
Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2013; 110:15758-15763
Philos. Trans. R. Soc. Lond. B Biol. Sci. 2015; 370, 20130624
Nature. 2014; 505:403-406
Nature. 2016; 536:419-424
Genome Res. 2012; 22:939-946
Life Technologies Limited Company, 2018
Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2014; 111:2229-2234
Sci. Data. 2024; 11:182
Nature. 2016; 538:201-206
Science. 2012; 338:222-226
Nature. 2014; 505:43-49
Nature. 2015; 525:104-108
Nature. 2017; 548:214-218
Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2022; 119, e2205272119
Eur. J. Hum. Genet. 2019; 27:941-951
Nat. Ecol. Evol. 2019; 3:966-976
Genetics. 2012; 192:1065-1093
Cell. 2017; 171:59-71.e21
Nature. 2022; 603:290-296
Sci. Adv. 2020; 6, eaaz0183
Science. 2018; 360:548-552
Nature. 2016; 534:200-205
Nat. Commun. 2018; 9:442
Nat. Commun. 2015; 6:8912
Nat. Commun. 2019; 10:1218
Nature. 2018; 555:190-196
Nat. Ecol. Evol. 2020; 4:334-345
Nature. 2017; 551:368-372
Curr. Biol. 2019; 29:1169-1177.e7
Sci. Adv. 2020; 6, eaaz5344
Nature. 2022; 601:588-594
Science. 2019; 365, eaat7487
Science. 2019; 363:1230-1234
Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2020; 117:12791-12798
Nat. Commun. 2017; 8:15694
Genome Res. 2021; 31:472-483
Science. 2016; 353:499-503
Sci. Adv. 2021; 7, eabi7673
Mol. Biol. Evol. 2022; 39, msac014
Nat. Commun. 2020; 11:939
Nature. 2015; 522:167-172
Nat. Genet. 2012; 44:517-521
J. Archaeol. Sci. 2004; 31:585-601
Tłumaczenie AUTOMATYCZNE:
Starożytne DNA podważa obowiązujące interpretacje odlewów gipsowych z Pompejów
Pompeje były rzymskim miastem położonym w Kampanii we Włoszech, 14 mil na południowy wschód od Neapolu. Zostało zniszczone przez wybuch wulkanu Somma-Wezuwiusz w 79 r. n.e. Pliniusza, znany również jako „erupcja Pompejów”. Miasto zostało pogrzebane pod osadem pumeksu lapilli, który powstał we wczesnej fazie erupcji, a następnie osadami popiołu z prądów piroklastycznych w późniejszej fazie. Miasto pozostało w dużej mierze zapomniane aż do jego ponownego odkrycia pod koniec XVIII wieku. Jego wyjątkowe zachowanie i wgląd w codzienne życie w Cesarstwie Rzymskim sprawiły, że Pompeje stały się jednym z najbardziej znanych na świecie stanowisk archeologicznych i zostały wpisane na Listę Światowego Dziedzictwa UNESCO. Najwcześniejsze stabilne osady w Zatoce Neapolitańskiej w epoce żelaza (IA) pochodzą z VIII wieku p.n.e., kiedy Oskowie zbudowali domy w pobliżu ujścia rzeki Sarno na niewielkim wzgórzu, reprezentującym pozostałości wielu lokalnych otworów wulkanicznych wznoszących się na otaczającej równinie Sarno.1 Ze względu na strategiczne położenie Pompeje stały się ważnym węzłem drogowym i portowym. Grecy, Etruskowie i Samnici próbowali podbić Pompeje i ostatecznie stały się one kolonią rzymską. Erupcja w 79 r. n.e. całkowicie zniszczyła Pompeje, ale piroklastyczne osady pokrywające miasto zachowały jego budynki, ulice i artefakty. Wiele ciał również zostało zachowanych, podobnie jak dzieła sztuki, biżuteria, zwoje książek i inne kulturowe pozostałości mieszkańców. Podczas wykopalisk rozpoczętych w 1748 r. znaleziono liczne ofiary, zarówno pojedyncze, jak i grupowane, w domach, na placach, w ogrodach i na ulicach tuż za murami miasta.2,3,4,5 W XIX wieku archeolog Giuseppe Fiorelli opracował metodę wykonywania odlewów poprzez wlewanie płynnego gipsu do pustych przestrzeni pozostałych po rozkładzie tkanek miękkich ofiar. Od tego czasu odkryto ponad 1000 ludzkich ofiar wśród ruin miasta, a 104 gipsowe odlewy zachowujące kształty ofiar i otaczające ich kości zostały wykonane przy użyciu metody Fiorelliego. W 2015 r. podczas renowacji 86 odlewów, próba skanowania tomografią komputerową (CT) lub prześwietlenia 26 z nich wykazała, że żaden nie zawierał kompletnych szkieletów. Odlewy były w przeszłości znacznie modyfikowane i prawdopodobnie kreatywnie odrestaurowywane, a różnice stylistyczne między odlewami częściowo odzwierciedlały preferencje estetyczne okresów, w których zostały wykonane.6 Popularne interpretacje tożsamości ofiar w Pompejach są zatem pod wpływem nie tylko archeologów, którzy je jako pierwsi opisali, ale także restauratorów, którzy zdecydowali się udoskonalić lub zmienić niektóre cechy kształtów ciał. Wyniki obrazowania ujawniły w niektórych przypadkach wprowadzenie elementów stabilizujących, takich jak pręty metalowe, a także częste usuwanie kości przed procesem odlewania, co komplikowało ustalenie płci na podstawie osteologicznej. Możliwe było ponowne zinterpretowanie niektórych odlewów, takich jak wcześniej wyobrażony wzdęty brzuch domniemanej kobiety w ciąży, prawdopodobnie utworzony przez pogniecione ubrania. Wiele badań potwierdziło możliwość pobrania danych DNA z szczątków ludzkich i zwierzęcych w Pompejach.7,8,9,10,11,12,13,14,15,16,17 Niedawno dane genetyczne z ludzkich szczątków szkieletowych znalezionych w Casa del Fabbro18 wykazały, że pochodzenie genetyczne tej osoby mieściło się w różnorodności genetycznej obserwowanej w regionie Cesarskiego Rzymskiego Lacjum (współczesne Lacjum), który miał większe wpływy wschodniego Morza Śródziemnego w porównaniu z poprzednim IA.19 Jako port, Pompeje są zazwyczaj postrzegane jako miasto o zróżnicowanej i mobilnej populacji. Analiza bioarcheologiczna ujawniła jednak wysoką częstotliwość cech niemetrycznych, które mogą wskazywać na jednorodność genetyczną lub wspólne wpływy środowiskowe.5 Starożytne DNA i izotopy strontu oferują możliwość lepszego zrozumienia różnorodności i pochodzenia mieszkańców Pompejów. Próbowaliśmy wydobyć informacje genetyczne z ludzkich gipsowych odlewów, wykorzystując wzbogacenie starożytnych ekstraktów DNA o mitochondrialne DNA i ponad milion celów polimorfizmu pojedynczego nukleotydu (SNP).20 Badanie przeprowadzono na silnie rozdrobnionych szczątkach szkieletowych zmieszanych z gipsem odzyskanym z różnych elementów anatomicznych 14 z 86 odlewów poddawanych renowacji. Rysunek S1 przedstawia mapę pokazującą, gdzie znaleziono 14 ofiar i gdzie wykonano odlewy. Naszym celem było przetestowanie interpretacji sugerowanych w przypadku braku danych genetycznych na temat tożsamości ofiar i ich wzajemnych relacji, w oparciu o kształt i położenie ciał, a także wzbogacenie informacji o danych osteologicznych uzyskanych wcześniej za pomocą obrazowania rentgenowskiego i tomografii komputerowej w większości niekompletnych szkieletów w odlewach.6 Takie wnioski ukształtowały sposób, w jaki historycy, archeolodzy i opinia publiczna wyobrażają sobie społeczeństwo tak żywo uwiecznione przez katastrofę. Ponadto zbadaliśmy pochodzenie genetyczne ofiar i porównaliśmy je ze znaną różnorodnością genetyczną współczesnych osób z miasta Rzym i jego zaplecza.
Wyniki i dyskusja
Zachowanie DNA i markery dziedziczone jednostronnie
W poniższej sekcji opisujemy osobniki, używając numerów odlewów21, które są powszechnie używane w literaturze bioarcheologicznej na temat stanowiska.
Odpowiednie identyfikatory genetyczne można znaleźć w Tabeli 1 i Danych S1A.
Pobraliśmy próbki fragmentów kości zmieszanych z gipsem z 14 różnych odlewów (Tabela S1; Rysunek S1) i przeszukaliśmy je, określając stężenie i degradację DNA (Tabela S2), a także stosując podejście oparte na hybrydyzacji w celu wzbogacenia o mitochondrialne DNA22 i 3000 autosomalnych SNP23 (Tabele S3 i S4). Na podstawie wyników przeszukiwania zdecydowaliśmy się wzbogacić siedem bibliotek częściowo poddanych działaniu UDG o około 1,2 miliona jądrowych SNP („1 240 000” zestaw SNP) (Dane S1A). Ponadto przeprowadziliśmy datowanie radiowęglowe czterech z wybranych osobników (Dane S1B). Liczba rzutów Identyfikator genetyczny Miejsce odkrycia SNP z 1 240 000 pokrytych zestawów Średnie pokrycie na 1 240 000 zestawach SNP Płeć genetyczna Kwantyfikator Trio Cel Y Haplogrupa Y Haplogrupa mtDNA C-do-T na końcu 5′ (biblioteka nie-UDG) C-do-T na końcu 5′ (biblioteka UDG) Oszacowanie zanieczyszczenia chromosomu X ANGSD: Liczba SNP Oszacowanie zanieczyszczenia chromosomu X ANGSD: Średnia Oszacowanie zanieczyszczenia chromosomu X ANGSD: C.I. 22 I3690 Dom Cryptoporticus 93 727 0,09 M M J2b2a1 N1b1a1 0,3 0,09 19 N/A N/A 25 I3682 Willa Tajemnic 53 739 0,047 M N/Aa E1b1b1b1b H N/A 0,1 0 N/A N/A 50 I3683 Dom Złotej Bransolety N/A N/A N/A M N/A H1h1 0,23 N/A N/A N/A N/A 51 I3686 Dom Złotej Bransolety 62 030 0,054 M M J2a1a4b T2c1c 0,15 0,04 4 N/A N/A 52 I3685 Dom Złotej Bransolety 364 533 0,437 M M T1a1a1b2b2b1a U1a1 0,2 0,02 350 0,0187 0–0,039 53 I3691 Dom Złotej Bransolety 286 023 0,309 M M E1b1b H 0,24 0,04 208 0,0086 0–0,026 Tabela 1 Podsumowanie wyników genetycznych Zobacz także Rysunek S1. a Kwantyfikacja nie została przeprowadzona Otwórz tabelę w nowej karcie Pięć próbek dostarczyło kompletnych lub częściowych genomów mitochondrialnych, ze wzorcami błędnych inkorporacji zasad na końcach odczytu typowymi dla starożytnego DNA (Tabela S3) i zostało pokrytych co najmniej 50 000 docelowych autosomalnych SNP, przy czym mediana pokrycia 1 240 000 SNP wahała się od 0,006× do 0,437× (Tabela 1; Dane S1A). Wszystkie pięć osób (Rysunek 1) zostało genetycznie określonych jako płeć męska, co oceniono na podstawie kwantyfikacji DNA przy użyciu zestawu Quantifiler Trio Kit (STAR Methods). Oszacowaliśmy również zanieczyszczenie chromosomu X dla dwóch osób, dla których istniały wystarczające dane do przeprowadzenia tej kwantyfikacji i stwierdziliśmy, że było ono poniżej 4%. W pozostałych przypadkach wzór uszkodzeń molekularnych i szacunki skażenia dostarczone przez dane mitochondrialne (tabele 1 i S3; dane S1A) wskazują, że wyniki są zgodne z autentycznym starożytnym DNA pochodzącym od pojedynczego osobnika. Wszystkie osobniki zostały określone jako należące do linii chromosomu Y (J2a, J2b, E1b i T1a), które pojawiły się po raz pierwszy w Azji Zachodniej i do dziś występują w najwyższych częstotliwościach w Azji Zachodniej i Środkowej, Europie Południowej i Afryce Północnej20,24,25,26,27 (dane S1C). Żaden z osobników nie miał dowodów na pokrewieństwo do trzeciego stopnia (dane S1D). Rysunek 1 Odlewy gipsowe z Pompejów i ich pierwotne lokalizacje w Pompejach Pokaż pełny podpisPrzeglądarka rysunków Odlewy gipsowe reprezentują populację o zróżnicowanym pochodzeniu Odkryliśmy, że pięć osobników jest przesuniętych od współczesnych Włochów, a także populacji włoskich z okresu IA i późnej IA oraz okresu imperialnego Etrusków na podstawie analizy głównych składowych (PCA) skonstruowanej na współczesnych populacjach zachodniej Eurazji i Afryki Północnej oraz populacjach światowych. Zamiast tego skupiają się bardziej z populacjami wschodniego Morza Śródziemnego, Lewantynu i Afryki Północnej (rysunki 2A i 2B). Ten wzór jest podobny do wzoru znalezionego dla populacji Cesarstwa Rzymskiego w centralnej Italii19 i wcześniej opublikowanego pojedynczego osobnika z Pompejów z danymi obejmującymi cały genom, którego współwykreśliliśmy z pięcioma osobnikami z nowo wygenerowanymi danymi.18 W niemonitorowanej analizie ADMIXTURE przy k = 6 (rysunki 2C, S2 i S3), osobniki z Pompejów różnią się od mniej więcej współczesnych osobników związanych z kulturą etruską pod względem proporcji składników pochodzenia zmaksymalizowanych u mezolitycznych europejskich łowców-zbieraczy (niższy u Pompejów), jak również u łowców-zbieraczy z Kaukazu (wyższy u Pompejów), co sprawia, że skład ich pochodzenia jest bardziej podobny do składu przodków Rzymian z centralnej Italii, a także współczesnych osobników z Morza Egejskiego i Anatolii. Osobnik 52 wykazuje skład przodków porównywalny do osobników lewantyńskich z okresu IA i rzymskiego, charakteryzujący się niewielkim komponentem zmaksymalizowanym w populacjach współczesnej Afryki Subsaharyjskiej i brakiem komponentu zmaksymalizowanego u europejskich łowców-zbieraczy. Ten osobnik najbardziej ściśle grupuje się z populacjami lewantyńskimi. Rysunek 2 Analiza głównych komponentów i analiza domieszek Pokaż pełny podpisPrzeglądarka rysunków Aby określić ilościowo wkład różnych źródeł pochodzenia, przetestowaliśmy różne modele 2- i 3-drożne przy użyciu qpAdm i raport działających modeli przy użyciu najmniejszej liczby źródeł, z p > 0,01 i współczynnikami poniżej 1 (Dane S2A i S2B). Używając dystalnego zestawu domniemanych populacji przodków, znaleźliśmy działające modele dla wszystkich osobników (Rysunek 3). W przypadku każdej osoby z odlewów, przodkowie spokrewnieni z rolnikami z okresu neolitu anatolijskiego (TUR_Marmara_Barcin_N) i/lub lewantyńscy rolnicy z okresu neolitu przedceramicznego (Levant_PPN) stanowią największą wnioskowaną proporcję (48%–75%), podczas gdy druga co do wielkości proporcja jest wnioskowana jako pochodząca od osób spokrewnionych z neolitycznymi rolnikami z Iranu (IRN_Ganj-Dareh_N) (26%–45%), z wyjątkiem osoby 25, którą można modelować jako wywodzącą 65,3% ± 4,5% swoich przodków od rolników z Levant_PPN i 34,7% ± 4,5% od pasterzy stepowych z epoki brązu (Steppe_EMBA), źródła przodków wymaganego przez żadną z pozostałych osób. Ten model wskazuje, pomimo niskiego pokrycia genomu danej osoby, na inną historię przodków obejmującą źródła europejskie, które nie przyczyniły się do powstania innych osób. Rysunek 3 Dystalne modele qpAdm Pokaż pełny podpisPrzeglądarka rysunków Osoby 22 i 51 można opisać jako składające się w około 62%–69% z przodków neolitycznych rolników z Anatolii (TUR_Marmara_Barcin_N) i 31%–38% z przodków neolitycznych rolników z Iranu (IRN_Ganj-Dareh_N). Wnioskuje się, że osobnik 52 nie ma przodków neolitycznych rolników z Anatolii (TUR_Marmara_Barcin_N). Zamiast tego można go modelować jako wywodzącego 57,7% ± 3,1% i 42,3% ± 3,1% swoich przodków odpowiednio od rolników z Levant_PPN i neolitycznych rolników z Iranu (IRN_Ganj-Dareh_N). Wynik ten potwierdza ściślejsze grupowanie tej osoby z współczesnymi osobami lewantyńskimi w analizie PCA i ADMIXTURE (Rysunek 3) i sugeruje niedawne pochodzenie lewantyńskie dla niej lub jej bezpośrednich przodków. Dwa alternatywne modele 3-drożne nie są odrzucane dla osoby 53. W obu przypadkach największy odsetek pochodzenia jest wyjaśniony przez kombinację komponentów pochodzących od neolitycznych rolników z Iranu (IRN_Ganj-Dareh_N) i neolitycznych rolników z Anatolii (TUR_Marmara_Barcin_N) — odpowiednio 69%–88% i 84%–97%. Trzeci komponent pochodzi albo od neolitycznych rolników z Lewantu (Levant_PPN) z 21,2% ± 7,1%, albo od osób chalkolitycznych o północnoafrykańskim pochodzeniu (Mediterranean_CA_NorthAfrican) z 9,8% ± 2,8%. Przetestowaliśmy również osoby jako potencjalnie pochodzące z bardziej zbliżonych źródeł, składających się z osób z końca II p.n.e. do początku I tysiąclecia n.e. z różnych regionów zachodniej Eurazji i Afryki Północnej, które w ramach swojej grupy są stosunkowo jednorodne genetycznie zgodnie z PCA (dane S2C i S2D). Modele robocze (p > 0,01) w dużej mierze wymagają populacji wschodniego Morza Śródziemnego, Lewantynu lub Afryki Północnej jako głównego źródła (dane S2C). Modele z przodkami nieodróżnialnymi od jednego ze źródeł, Turkey_West i Turkey_Central, działają dla osoby 22 i osoby 51. Modele robocze 2-drożne dla osoby 25 obejmują wschodnie źródło śródziemnomorskie, które przyczyniło się do większości przodków, w połączeniu ze źródłem bałkańskim, środkowośródziemnomorskim lub środkowoeuropejskim. Podobnie, osobnik 53 może być dopasowany jedynie jako mieszanka źródeł pochodzenia, z trzema testowanymi modelami, ∼80% Turcja_Centralna z 20% Sardynia_Punic, ∼67% Turcja_Wschód z ∼33% Sardynia_Punic i ∼80% Liban z ∼20% Włochy_IA (osoby IA z Półwyspu Apenińskiego), wszystkie pasujące do danych. Nie znaleziono żadnego działającego modelu 1- lub 2-drożnego dla osobnika 52, ale wszystkie wykonalne modele z najwyższymi wartościami p (pomiędzy 1,64e−3 i 2,321e−6) zawierają Egipt jako źródło przyczyniające się do większości pochodzenia (∼51%–73%), co sugeruje, że rzeczywiste źródło jest genetycznie podobne do tego reprezentowanego przez osoby hellenistycznego Egiptu (dane S2D). Wcześniej opublikowany indywidualny f1R wymaga dla wszystkich modeli roboczych około 73%–84% ze źródła libańskiego, w połączeniu ze źródłem europejskim. Charakterystyka demograficzna i fenotypowa Tylko osobnik 52 dostarczył wystarczających danych genetycznych, aby wykryć serie homozygotyczności (ROH), co może dać wgląd w efektywną wielkość populacji i praktyki małżeńskie.28 U tego osobnika znaleziono tylko pojedynczy krótki ROH o długości 4,71 cM (rysunek S4), co jest niezgodne z blisko spokrewnionymi rodzicami lub małą populacją pochodzenia, w której osobniki mają wyraźne pokrewieństwo w tle. Ogólnie rzecz biorąc, heterogeniczność genetyczna widoczna w próbce genomów z Pompejów i brak długich ROH u jednego osobnika są zgodne z dużą, zróżnicowaną populacją, co sugeruje jej rola jako portu rzecznego i opis jako złożonej z różnych lokalnych i imigranckich grup kulturowych przez starożytnych autorów.5 Stanowi to pewne wsparcie dla hipotezy, że wysokie częstotliwości niektórych cech niemetrycznych zaobserwowane u ofiar erupcji w 79 r. n.e. mogą wynikać ze wspólnych zmiennych środowiskowych w trakcie etapów rozwoju, a nie ze wspólnego tła genetycznego. Jednak wśród osobników, które badaliśmy genetycznie, tylko osobnik 22 wykazywał takie wspólne cechy niemetryczne, a konkretnie obecne stosunkowo dużych kosteczek słuchowych w kościach lambda i Wormia w szwie lambdoidalnym.5 Celowane analizy genetyczne osób z takimi cechami i bez nich mogą ujawnić poziom jednorodności w pochodzeniu wśród tych pierwszych. Markery fenotypowe dla widocznych zewnętrznie cech, oceniane za pomocą systemu HIrisPlex-S,29 sugerują najwyższe prawdopodobieństwo brązowych oczu u osób 25, 51 i 53 oraz ciemnej skóry i czarnych włosów u osoby 52 (dane S3A). We wszystkich analizowanych próbkach wykryto kilka alleli ryzyka związanych z różnymi chorobami, ale niskie pokrycie i możliwa interakcja między genotypem a środowiskiem nie pozwoliły nam przewidzieć żadnej z tych cech z pewnością (dane S3B–S3G). Połączone ustalenia genetyczne i osteologiczne przeczą niektórym z ustalonych popularnych narracji Naukowcy, jak również wyobraźnia opinii publicznej, interpretowali wrażenia dotyczące pozycji ciała i kształtu w gipsowych odlewach na różne sposoby, spekulując na temat tożsamości ofiar i ich potencjalnych powiązań ze sobą. Kiedy w 2015 r. rozpoczęto renowację i badanie odlewów za pomocą nowych podejść naukowych, nie było żadnych recenzowanych odniesień osteologicznych dostarczających rzetelnych danych do charakterystyki poszczególnych osób, a jedynymi dostępnymi informacjami były te dostarczone przez archeologów. Niemniej jednak niektóre interpretacje dotyczące płci i relacji między osobami znalazły szerokie uznanie wśród społeczności naukowców i opinii publicznej, rozprzestrzeniając się za pośrednictwem wystaw muzealnych oraz materiałów edukacyjnych i reklamowych. Dlatego też zintegrowanie naszych nowo zgłoszonych danych genetycznych i izotopowych pozwala nam ponownie przyjrzeć się niektórym szeroko rozpowszechnionym interpretacjom. Dom złotej bransolety Dom złotej bransolety znajduje się w Insula 17, Regio VI (Rysunek 1). Nowatorska i złożona forma architektoniczna domu wynikała z połączenia rzymsko-italskiego modelu domu atrium i willi podmiejskiej. Zbudowany na trzech poziomach, wykorzystywał mury miejskie i zbocze wzgórza. Jego pokoje były rozmieszczone tarasowo na trzech poziomach w pozycji panoramicznej. Dom był szczególnie bogaty, a kolorowe freski zdobiły jego ściany. W 1974 roku odkryto cztery ofiary w bliskim sąsiedztwie na miejscu zbrodni i zinterpretowano je jako stanowiące genetycznie spokrewnioną rodzinę.30 Pierwsze trzy ofiary znaleziono u podnóża schodów prowadzących do ogrodu i nabrzeża: dwie osoby dorosłe (osoby 50 i 52) i małe dziecko (osoba 51), najwyraźniej stojące na biodrze osoby 52. Osobę 52 tradycyjnie interpretowano jako kobietę i matkę ze względu na skojarzenie z dzieckiem i misterną złotą bransoletkę o wyjątkowej wadze (6,1 g) noszoną na jednym ramieniu, która również dała domowi nazwę. Drugi dorosły, osobnik 50, został zinterpretowany jako ojciec w genetycznie spokrewnionej grupie rodzinnej. Na podstawie ograniczonej analizy rentgenowskiej oszacowano, że osobniki 50, 51 i 52 to odpowiednio młody dorosły, 5-6-latek i młodszy dorosły w średnim wieku, ale nie można było jednoznacznie przypisać płci żadnego z dorosłych ani dziecka.6 Zasugerowano, że te trzy ofiary szukały schronienia na klatce schodowej i zostały zabite przez schody, które się zawaliły, gdy próbowały uciec z domu do portu miejskiego.30 Kilka metrów dalej znaleziono ciało dziecka w wieku około 4 lat (osobnik 53), zinterpretowane jako chłopiec z powodu wybrzuszenia w tynku w okolicy narządów płciowych.30 Dziecko to zostało prawdopodobnie oddzielone od grupy rodzinnej podczas ucieczki korytarzem prowadzącym do ogrodu. Kwantyfikacja DNA pozwoliła nam oszacować płeć molekularną wszystkich osobników, chociaż identyfikacja płci na podstawie analizy genomu jądrowego była możliwa tylko dla trzech osobników (wszystkich oprócz osobnika 50). Wszystkie osobniki zostały określone jako genetycznie męskie, w tym domniemana dorosła kobieta (osoba 52). Co więcej, zarówno mitochondrialne DNA, jak i dane z całego genomu nie wykazały żadnych dowodów na pokrewieństwo biologiczne, przynajmniej do trzeciego stopnia, między żadnym z osobników, co fałszuje dominującą narrację o tych czterech ofiarach jako genetycznie spokrewnionej rodzinie. Zachowanie materiału genetycznego u dorosłego osobnika 50 pozwoliło nam zrekonstruować tylko genom mitochondrialny, nie wykazując żadnych powiązań matrylinearnych z pozostałymi trzema osobnikami, chociaż nie możemy wykluczyć, że mógł być z nimi spokrewniony na poziomie jądrowym. Analizy PCA i ADMIXTURE pokazują znaczną zmienność w rozmieszczeniu tych trzech osobników w obrębie różnorodności genetycznej zaobserwowanej u włoskich mieszkańców Cesarstwa Rzymskiego (rysunek 2).19 Skład genetyczny przodków trzech osobników wywnioskowany przez qpAdm wydaje się odrębny zarówno w modelowaniu dystalnym, jak i proksymalnym (dane S2), co sugeruje, że ich przodkowie pochodzili z różnych populacji wschodniego Morza Śródziemnego lub Afryki Północnej.
Próba rekonstrukcji wyglądu tych osobników
wnioskując po fenotypach na podstawie genotypów, odkryliśmy, że osobnik 52 miał czarne włosy i ciemną skórę, podczas gdy byliśmy w stanie potwierdzić tylko kolor oczu osobników 51 i 53, który był brązowy (Data S3A).
Dom kryptoporticusa
Dom kryptoporticusa znajduje się w Insula 6, Regio I (Rysunek 1). Dom został pierwotnie zbudowany w III wieku p.n.e. Swoją obecną nazwę zawdzięcza kryptoporticusowi, podziemnemu przejściu z otworami, biegnącemu wzdłuż trzech boków czworokątnego ogrodu otwierającego się na południe. Otwiera się na niego salon (oecus) i cztery termalne pomieszczenia kąpielowe (apodyterium, frigidarium, tepidarium i calidarium, przy czym to ostatnie poprzedza praefurnium). Kryptoportikus pierwotnie miał sklepienia kolebkowe i krzyżowe, a ściany oecus były ozdobione serią scen inspirowanych Iliadą, co stanowi jeden z najwspanialszych przykładów malarstwa pompejańskiego z ostatniego etapu drugiego stylu (epoka Augusta). Ściany czterech pokojów kąpielowych były również pomalowane wykwintnymi obrazami scenicznymi. Podczas wykopalisk w 1914 r. w ogrodzie przed domem znaleziono dziewięć osobników, ale udało się wykonać odlewy tylko czterech z nich. Spośród tych czterech osobników, dwa (osobniki 21 i 22) znaleziono blisko siebie, w tym, co zinterpretowano jako uścisk (ryc. 1), a archeolodzy wysunęli hipotezę, że mogły to być dwie siostry, matka i córka, lub kochanki.21,31,32,33,34 Tomografia komputerowa elementów szkieletu zachowanych w odlewach pozwoliła oszacować wiek osobnika 21 na 14–19 lat, a osobnika 22 na młodego dorosłego. Oszacowanie płci kostnej nie było możliwe, ale odnotowano względną grację czaszki osobnika 22.6
Analiza genetyki jądrowej zakończyła się sukcesem tylko w przypadku osobnika 22 i wykazała, że był mężczyzną, wykluczając możliwość, że para ofiar była siostrami lub matką i córką. Podobnie jak wszystkie inne analizowane próbki, osobnik ten mieści się w śródziemnomorskiej zmienności genetycznej jądra, z przodkami zgodnymi z ówczesnymi populacjami anatolijskimi (dane S2C) i nosi mitochondrialną haplogrupę N1b1a1, prawdopodobnie z bliskowschodniego/północnoafrykańskiego pochodzenia.35,36
Rekonstrukcja genomu mitochondrialnego zakończyła się sukcesem również w przypadku osobnika 21 (dane S1), który nosi dwa pochodne SNP odrębnej haplogrupy R i żadnego z pochodnych SNP prowadzących do N1b1a1, co jest zgodne z brakiem pokrewieństwa matczynego między tymi dwoma osobnikami.
Willa tajemnic Ta willa, która została po raz pierwszy wykopana w latach 1909–1910 i jest nadal przedmiotem drobnych badań wynikających z obaw o ochronę i konserwację, znajduje się na północny zachód od murów miejskich, w pobliżu starożytnego brzegu morza (ryc. 1). Większość jego ścian, sufitów, a w szczególności fresków przetrwała wybuch Wezuwiusza w dużej mierze nienaruszona. Nazwa (Villa dei Misteri) pochodzi od serii fresków datowanych na I wiek p.n.e., przedstawiających rytuał prawdopodobnie poświęcony Bachusowi, bogu wina, płodności i religijnej ekstazy. Willa była bardzo duża, z wieloma różnymi pokojami i przestrzeniami funkcjonalnymi, co było powszechne w przypadku wielu rzymskich willi z tego okresu. Prasa do wina została znaleziona i odrestaurowana w jej oryginalnym miejscu, co odzwierciedla fakt, że zamożne rodziny często produkowały własne wino, oliwę z oliwek i inne produkty, ponieważ większość willi obejmowała część gruntów rolnych. Ciała dwóch dorosłych, interpretowanych jako kobiety, i dziecka znaleziono w złożu pumeksu lapilli, co wskazuje, że zostali złapani we wczesnej fazie erupcji na górnym piętrze części rolniczej i spadli na dolne piętro. Sześć ciał znaleziono w nakładających się złożach popiołu, co wskazuje, że przetrwali pierwszą fazę erupcji. Wśród nich osobnik 25 został znaleziony sam w pokoju, leżący na warstwie popiołu, z żelaznym pierścieniem z wygrawerowanym karneolem kobiecej figurki na małym palcu lewej ręki, pięcioma brązowymi monetami i biczem jako przedmiotami osobistymi37 (Rysunek S1).
Odlew tej ofiary pokazuje niektóre z najlepiej zachowanych szczegółów anatomicznych i tekstylnych. Mężczyzna miał około 1,85 m wzrostu, był szczupły, z wypukłym grzbietem nosa. Zgodnie ze śladami na jego ubraniach i ozdobach miał należeć do niskiej klasy społecznej i został zinterpretowany jako dozorca willi, który wiernie pozostał na swoim stanowisku.21 Nasza analiza genetyczna potwierdza oszacowanie płci męskiej i mieszane pochodzenie genetyczne, które prawdopodobnie można prześledzić zarówno do źródeł wschodniośródziemnomorskich, jak i europejskich (Dane S2C). Aby dowiedzieć się więcej o pochodzeniu geograficznym tego osobnika i jego mobilności życiowej, przeprowadziliśmy analizę izotopów strontu i tlenu (Rysunek 4). Chociaż pomiar strontu (87Sr/86Sr = 0,7084729 ± 0,00001) jest wyższy niż wartości uzyskane w Pompejach (μ = 0,70806, n = 2),38 wartość ta jest zgodna z zakresem biodostępnego Sr występującym na południowej równinie Kampanii (rysunek 4A [0,7075–0,7085]39). Jest to wartość poza lokalnym zasięgiem jaką opisano w rzymskiej populacji Lacjum40,41 i regionach w północnych i południowych Włoszech.38,42,43 Skład szkliwa δ18O (δ18O VSMOW = 26,77‰, δ18O VPDB = −4,03‰) jest zgodny z przybrzeżnymi rozkładami wartości δ18O w centralnej części Półwyspu Apenińskiego (rysunek 4B).38,42,44 Powinowactwa izotopowe z biodostępnymi 87Sr/86Sr i δ18O w centralnej części Półwyspu Apenińskiego potencjalnie wskazują na wczesne zamieszkiwanie w Pompejach i ich okolicach; jednakże, chociaż ta ocena sugeruje lokalne pochodzenie, które mieści się w oczekiwanych lokalnych zakresach, podobieństwa w geologicznych i biodostępnych systemach izotopowych można znaleźć w całym Morzu Śródziemnym.45,46 Rysunek 4 Analiza strontu i tlenu u osobnika 25 z willi tajemnic
Oprócz podkreślenia kosmopolityzmu i mobilności, które ukształtowały populacje miejskie Cesarstwa Rzymskiego, badanie to ilustruje, jak mało wiarygodne mogą być narracje oparte na ograniczonych dowodach, często odzwierciedlając światopogląd badaczy w tamtym czasie. W tym świetle analiza genetyczna może znacznie wzbogacić te narracje, gdy zostanie zintegrowana z danymi archeologicznymi. Na przykład w dwóch analizowanych przez nas willach osoby wcześniej uważane za kobiety, w przypadku braku starannej oceny osteologicznej, okazały się genetycznie płci męskiej. Odkrycia te podważają długotrwałe interpretacje, takie jak kojarzenie biżuterii z kobiecością lub interpretowanie bliskości fizycznej jako wskaźnika biologicznych pokrewieństw. Podobnie dane genetyczne komplikują proste narracje pokrewieństwa: w domu złotej bransolety, który jest jedynym miejscem, dla którego mamy dane genetyczne od wielu osób, cztery osoby powszechnie interpretowane jako rodzice i ich dwójka dzieci nie są w rzeczywistości spokrewnione genetycznie. Zamiast tworzyć nowe narracje, które mogłyby również błędnie przedstawiać doświadczenia życiowe tych osób, wyniki te zachęcają do refleksji nad koncepcjami i konstrukcją płci i rodziny w dawnych społeczeństwach, a także w dyskursie akademickim.
Ponadto możliwe jest, że wykorzystywanie odlewów jako nośników opowieści doprowadziło do manipulacji ich pozami i względnym pozycjonowaniem przez restauratorów w przeszłości. Dane genetyczne, wraz z innymi podejściami bioarcheologicznymi, dają możliwość pogłębienia naszej wiedzy na temat ludzi, którzy stali się ofiarami wybuchu Wezuwiusza i podkreślają, w jaki sposób integrowanie danych genetycznych z informacjami archeologicznymi i historycznymi, nawet w historycznie bogatym miejscu, takim jak Pompeje, znacznie zwiększa nasze zrozumienie przeszłych żyć i zachowań.
Dostępność zasobów Kontakt główny
Więcej informacji i próśb o zasoby i odczynniki należy kierować do głównego kontaktu Alissy Mittnik (alissa_mittnik@eva.mpg.de), który je spełni.
Dostępność materiałów Niniejsze badanie nie wygenerowało nowych unikalnych odczynników.
Dostępność danych i kodów
• Wszystkie dane potrzebne do oceny wniosków zawartych w artykule znajdują się w artykule i/lub w informacjach uzupełniających.
• Nowo zgłoszone dane dotyczące sekwencjonowania starożytnego zostały złożone w Europejskim Archiwum Nukleotydów (ENA) i są publicznie dostępne od daty publikacji, z następującym numerem akcesyjnym ENA: PRJEB74999.
Genotypy haploidalne dla panelu 1 240 000 nowo zgłoszonych osobników starożytnych i dane dotyczące genotypów nowo zgłoszonych osobników współczesnych są dostępne na stronie https://reich.hms.harvard.edu/datasets.
• Niniejszy artykuł nie zgłasza oryginalnego kodu.
• Wszelkie dodatkowe informacje wymagane do ponownej analizy danych zgłoszonych w tym dokumencie roboczym są dostępne na żądanie u głównego kontaktu. Podziękowania Dziękujemy Aisling Kearns, Rebecce Bernardos, Zhao Zhang, Matthew Ferry, Megan Michel, Jonasowi Oppenheimerowi i Kristin Stewardson za wsparcie w pracach nad starożytnym DNA, a także Domenico Sparice, Michaelowi McCormickowi i Solenn Troadec za krytyczne uwagi do manuskryptu. Prace laboratoryjne i analiza starożytnego DNA we Florencji zostały sfinansowane przez grant PRIN nr 2020HJXCK9 Ministero dell’Università e della Ricerca Italiano „Pompeii: A Molecular Portrait” dla Davida Caramelli, grant Unii Europejskiej — Next Generation EU — PNRR M4C2 — Investmento 1.3. PE5-Change i NBFC Ministero dell’Università e della Ricerca Italiano, PNRR M4C2, „Dalla ricerca all’impresa,” Investimento 1.4, Project CN00000033. D.R. jest badaczem Howard Hughes Medical Institute (HHMI), a prace laboratoryjne i analiza starożytnego DNA na Harvardzie były również wspierane przez grant National Institutes of Health HG012287, grant John Templeton Foundation 61220, program Allen Discovery Center (który jest programem Paul G. Allen Frontiers Group doradzanym przez Paul G. Allen Family Foundation) oraz darowiznę od J.-F. Clin. Dziękujemy dr Brendanowi J. Culletonowi za przeprowadzenie datowania radiowęglowego na Pennsylvania State University. Współczynniki strontu mierzono za pomocą TIMS, przy pomocy dr. Ann Heatherington i George Kamenov, a stosunki izotopów tlenu i węgla zostały zmierzone przez dr Jasona Curtisa.
…
Model eksperymentalny i szczegóły podmiotu Odlewy gipsowe W 79 r. n.e. wybuch wulkanu Somma, który doprowadził do powstania Wezuwiusza, zniszczył Pompeje i zabił większość populacji. Gdy ludzie powoli umierali z powodu bolesnych, gorących i śmiercionośnych gazów i/lub popiołu, zostali pokryci pumeksem i popiołem. Następnie opady deszczu spowodowały, że ciała zostały scementowane w popiele, a podczas gdy tkanki miękkie uległy rozkładowi, stwardniały popiół zachował zarys ciał. Imponujące wykopaliska mające na celu odkrycie miasta Pompeje rozpoczęły się w 1748 roku i trwały sporadycznie, aż do momentu, gdy archeolog Giuseppe Fiorelli zaczął prowadzić badania systematycznie, prowadząc szczegółowe zapisy wszystkich znalezisk. W 1863 roku Fiorelli opracował metodę wykonywania odlewów gipsowych niektórych ofiar wybuchu, wlewając płynną kredę do pustych przestrzeni pozostawionych przez ciała w stwardniałym popiele.64 Metoda ta pozwoliła odtworzyć kształt ciał, nawet z ich wyrazem twarzy w chwili śmierci (rysunek S1). Odlewy gipsowe wykonano dla 104 z około 1000 ofiar znalezionych w Pompejach. Pobrano próbki starożytnych osób Podczas ostatnich wysiłków renowacji odlewów w Parku Archeologicznym Pompeje mieliśmy okazję zebrać fragmenty kości i zębów z wnętrza odlewów. Próbki szkieletu były dostępne przez uszkodzone części odlewów i wykazywały różny stopień zachowania. W niektórych przypadkach materiał kostny był zmieszany z gipsem i bardzo rozdrobniony i kruchy (Rysunek S1). Odlewy, z których pobrano próbki, zostały wykopane w siedmiu miejscach w Pompejach (Tabela S1). Pierwszy zestaw próbek (Zestaw 1: Numery odlewów 21, 22, 50, 51, 52 i 53) od sześciu osób z Domu Cryptoporticus i Domu Złotej Bransolety został wybrany do analizy molekularnej w celu sprawdzenia, czy rekonstrukcja relacji między nimi dokonana na podstawie badań archeologicznych została potwierdzona. Później zebrano kolejny zestaw próbek od ośmiu dodatkowych osób (Zestaw 2) (Tabela S1). Szczegóły metody Pobieranie próbek materiału szkieletowego i ekstrakcja DNA Pobieranie próbek, ekstrakcja DNA i przygotowanie biblioteki wszystkich okazów przeprowadzono w Jednostce Antropologii Molekularnej Uniwersytetu we Florencji, najnowocześniejszym ośrodku poświęconym analizie starożytnych próbek DNA. Aby usunąć potencjalne zanieczyszczenie, zewnętrzna warstwa fragmentów kości i zębów została usunięta mechanicznie za pomocą obrotowego narzędzia ściernego (seria Dremel 300). Po szczotkowaniu każdą próbkę napromieniowano światłem ultrafioletowym (λ = 254 nm) przez 45 min w Biolink DNA Crosslinker (Biometra). DNA wyekstrahowano z około 50 mg proszku zebranego z kości lub korzenia zęba zgodnie z protokołem zaprojektowanym w celu optymalizacji odzyskiwania bardzo krótkich fragmentów DNA w wysoce zdegradowanych próbkach.65 Przygotowanie biblioteki DNA Biblioteki Illumina NGS skonstruowano zaczynając od 20 μl ekstraktu DNA, zgodnie z protokołem dwuniciowego DNA, używając unikalnej kombinacji dwóch indeksów na okaz. Biblioteki bez żadnego traktowania UDG stworzono dla Zestawu 1,47, aby umożliwić ocenę wzorców deaminacji jako kryterium autentyczności.
Wyprodukowaliśmy biblioteki z częściowym traktowaniem UDG dla wszystkich 14 próbek66 do przesiewu i potencjalnego wychwytywania 1240K SNP. Kontrole negatywne sprawdzano zarówno za pomocą qPCR, jak i chipu Agilent 2100 Bioanalyzer DNA 1000. Po ligacji adaptera puste próbki miały stężenie o 4–5 rzędów niższe niż próbki biologiczne, podczas gdy indeksowane produkty PCR wykazały obecność tylko dimerów indeksów adaptera. Wychwytywanie i sekwencjonowanie mitochondrialnego DNA Na Uniwersytecie we Florencji biblioteki nieobrobione UDG z zestawu 1, wraz z ekstrakcją i pustymi próbkami biblioteki, zostały wzbogacone o mitochondrialne DNA zgodnie z protokołem multipleksowego wychwytywania22 i sekwencjonowane na instrumencie Illumina MiSeq przez 2×76+8+8 cykli. Po demultipleksowaniu, surowe dane sekwencyjne analizowano przy użyciu potoku specyficznego dla próbek starożytnego DNA53, przy użyciu następujących narzędzi zaimplementowanych w potoku. Adaptery zostały odcięte, a odczyty sparowanych końców z minimalnym nakładaniem się 10 pb zostały połączone w jedną sekwencję przy użyciu Clip&Merge w wersji 1.7.4. Następnie połączone odczyty zostały zmapowane na zmienionej sekwencji referencyjnej Cambridge, rCRS (GenBank: NC_012920) przez CircularMapper, aby uwzględnić kolistość genomu mitochondrialnego. Duplikaty zostały usunięte przy użyciu DeDup, narzędzia, które bierze pod uwagę oba końce fragmentów, aby rozpoznać je jako klonalne. Odczyty z jakością mapowania poniżej 30 zostały odrzucone. Wyniki mapowania tych próbek przedstawiono w Tabeli S3. Próbki 22, 50, 51, 52 i 53 wykazały średnie pokrycie wynoszące odpowiednio 55,39, 37,34, 3,43, 40,82 i 69,85, przy czym ponad 99% genomu mitochondrialnego było pokryte co najmniej 5 sekwencjami, z wyjątkiem próbki 51 o niższym pokryciu (ponad 80% genomu mitochondrialnego było pokryte co najmniej 2 sekwencjami). Nie uzyskano żadnych użytecznych danych dla próbki 21.
Drugie wychwytywanie mitochondrialnego DNA, wychwytywanie autosomalne i sekwencjonowanie
Przeszukaliśmy alikwoty wszystkich 14 przygotowanych bibliotek poddanych częściowej obróbce UDG, a także trzy puste próbki ekstrakcyjne i biblioteczne w starożytnych ośrodkach DNA Harvard Medical School, Boston MA, USA, metodą hybrydyzacji w roztworze, wzbogacając genom mitochondrialny,67 wraz z około 3000 jądrowych SNP przy użyciu wcześniej opisanego wychwytywania opartego na kulkach23,68 z sondami zastąpionymi przez amplifikowane oligonukleotydy syntetyzowane przez CustomArray Inc. Po wychwycie ukończyliśmy miejsca adaptera przy użyciu PCR, dołączając podwójne kombinacje indeksów do każdej wzbogaconej biblioteki. Sekwencjonowaliśmy produkty przesiewowe na Illumina NextSeq500 przy użyciu zestawów v.2 150 cycle dla 2 × 76 cykli i 2 × 7 cykli. Wyniki przesiewu podsumowano w danych S1A. W przypadku siedmiu bibliotek, które przeszły przesiew przeprowadzony w Harvard Medical School, przeprowadziliśmy przechwytywanie 1240K, stosując dwie rundy wzbogacania w roztworze na docelowym zestawie 1 237 207 SNP przy użyciu wcześniej zgłoszonych protokołów.49,52 Po zindeksowaniu produktów wzbogacenia w sposób, który przypisał unikalną kombinację indeksów do każdej biblioteki,69 zsekwencjonowaliśmy wzbogacone produkty na instrumencie Illumina NextSeq500 przy użyciu zestawów v.2 150 cycle dla 2 × 76 cykli i 2 × 7 cykli.
Kwantyfikacja i analiza statystyczna
Kwantyfikacja i ocena konserwacji DNA Ekstrakty DNA z zestawu 1 zostały skwantyfikowane w dwóch powtórzeniach na Uniwersytecie we Florencji, aby uzyskać wstępny opis konserwacji molekularnej tak szczególnego materiału. Obecność inhibitorów i poziom degradacji DNA oceniano przy użyciu zestawu Quantifiler Trio DNA Quantification Kit (Thermo Fisher Scientific, Oyster Point, Kalifornia). Reakcje amplifikacji PCR w czasie rzeczywistym zawierały 10,5 μl mieszanki Primer-Probe Mix, 12,5 μl mieszanki Master Mix i 2,0 μl próbki DNA zgodnie z instrukcją użytkownika.70 Dane analizowano przy użyciu oprogramowania HID Real-Time PCR Analysis Software v1.2 z podanymi ustawieniami. Wyniki kwantyfikacji podsumowano w tabeli S2. Nie uzyskano żadnych wyników z próbki 21 dla wszystkich analizowanych celów. Wartości kwantyfikacji uzyskane z próbek 22 i 50 wynosiły zero dla dużego autosomalnego celu, prawdopodobnie z powodu degradacji DNA w zbyt krótkich fragmentach. Podobne wyniki uzyskano dla markera Y, w którym stężenie wahało się od 2,8 do 107 pg/μl dla wszystkich pięciu próbek. Pozytywne wyniki dla markera Y sugerowały, że ….. próbki były męskie. Ponieważ nie uzyskano żadnych wyników dla dużego autosomalnego markera z dwóch próbek, indeks degradacji (DI) mierzący typowe zanieczyszczenie starożytnym DNA można było obliczyć wiarygodnie tylko dla próbek 52, 53 i 51. Szacowane wartości DI dla tych próbek wynosiły odpowiednio 19,2, 7,6 i 14,8. Jak podano w instrukcji użytkownika,70 te wartości DI wskazują, że DNA w próbkach było umiarkowanie/znacznie zdegradowane, co jest zgodne z autentycznym starożytnym DNA. Nie zaobserwowano znaczącej zmiany w stosunku do kontroli bez matrycy w IPC CT, co wskazuje, że jeśli występowało hamowanie, nie było ono wystarczające, aby znacząco stłumić amplifikację IPC. Przetwarzanie danych sekwencjonowania Przycięliśmy kody kreskowe i adaptery z surowych sekwencji i połączyliśmy pary odczytów z co najmniej 10 lub 15 nakładającymi się parami zasad zgodnie z długością sekwencjonowanych odczytów i zmapowaliśmy uzyskane odczyty do ludzkiego genomu referencyjnego, hg19 [GRCh37] przy użyciu polecenia samse programu BWA (wersja 0.6.1).54 Cztery próbki dostarczają kompletne lub prawie kompletne genomy mitochondrialne po wzbogaceniu docelowym mtDNA przeprowadzonym na bibliotekach nieobrobionych UDG przygotowanych we Florencji na pierwszej partii sześciu zebranych próbek. Oceniliśmy autentyczność tych genomów mitochondrialnych, badając charakterystyczne wzorce uszkodzeń aDNA55 i potwierdzając pojedyncze źródło sekwencji mitochondrialnych przy użyciu contamMix56 (Tabela S3). Sekwencje konsensusowe osób zostały przesłane do Haplogrep357 w celu określenia haplogrup mtDNA. Określono również haplogrupy mitochondrialne dla danych uzyskanych z bibliotek poddanych częściowemu działaniu UDG we wszystkich 14 próbkach za pomocą Haplogrep3.57 W przypadku próbek przetworzonych w obu laboratoriach porównano profile mitochondrialne uzyskane z dwóch różnych protokołów bibliotecznych, co stanowiło dalsze potwierdzenie autentyczności danych. Określiliśmy płeć genetyczną na podstawie danych z przechwytywania 1240K za pomocą sexDetERRmine.62 Spośród siedmiu osób, które przeszły przesiew, udało nam się ustalić, że pięć było genetycznie męskich (zgodnie z jednym chromosomem X i jednym chromosomem Y oraz niezgodnie z dwoma chromosomami XX i brakiem chromosomu Y), podczas gdy dwie osoby pozostały nieokreślone z powodu niskiego pokrycia (dane S1A). Wzory uszkodzeń ocenione za pomocą MapDamage 2.055 były niższe niż w danych wygenerowanych w przechwytywaniu mtDNA przeprowadzonym we Florencji, co jest oczekiwane ze względu na częściowe leczenie UDG zastosowane w bibliotekach przechwytywania 1240K (Tabela 1). Oszacowania płci pozostały stałe w zakresie rozdzielczości przedziałów ufności po zachowaniu tylko odczytów z błędnymi włączeniami C-do-T i G-do-A odpowiednio na końcach 5′ i 3′, przy użyciu pmdtools v0.6071 (dane S1A).
Oszacowaliśmy heterozygotyczność na chromosomie X samców przy użyciu ANGSD.59 W przypadku dwóch samców z wystarczającym pokryciem co najmniej 200 informacyjnych SNP na chromosomie X oszacowaliśmy wskaźniki skażenia jądrowego poniżej 4%. Osoby z działającymi danymi miały medianę pokrycia na zestawie 1240K SNP wynoszącą 0,054 (zakres 0,006–0,437). Przygotowaliśmy zbiór danych genotypowych do analizy genetycznej populacji, używając zmapowanych sekwencji z dwoma przyciętymi zasadami z końców se, wybierając losowo jeden allel w miejscach wychwytu 1240K i zachowując pięć osobników do analizy, które miały co najmniej 10 000 SNP objętych co najmniej raz (zakres 53 739–364 533). Wyniki podsumowano w Danych S1A. Przypisaliśmy haplogrupy chromosomów Y zgodnie z filogenezą Yfull 8.09, używając wszystkich przyciętych odczytów zmapowanych na chromosomie Y i zgłaszamy najbardziej diagnostyczne SNP w dół (Dane S1C). Analiza genetyki populacji i pokrewieństwa Zebraliśmy zestaw danych referencyjnych składający się z danych całego genomu od 2674 starożytnych osobników72, a także wcześniej zgłoszonych danych sekwencjonowania całego genomu od 346 współczesnych osobników na całym świecie73,74,75,76 i połączyliśmy pięć nowo zgłoszonych pseudohaploidalnych genotypów z Pompejów. Połączyliśmy ten zestaw danych z 3291 współczesnymi osobnikami ze 109 populacji na całym świecie genotypowanych na podstawie SNP Affymetrix Human Origins (HO).68,77,78,79,80,81 Użyliśmy funkcji smartpca programu EIGENSOFT (57) do wykonania analizy głównych składowych (PCA) przy użyciu domyślnych parametrów, z ustawieniami lsqproject:YES i numoutlier:0. Przeprowadziliśmy projekcję starożytnych osobników na wykres PCA 1196 współczesnych osobników z zachodniej Eurazji i 1900 współczesnych osobników z całego świata, ograniczając się do zestawu HO 597 573 SNP.
Przeprowadziliśmy klasteryzację przy użyciu nienadzorowanego ADMIXTURE,63 po przycięciu SNP w nierównowadze sprzężeń ze sobą za pomocą PLINK54 przy użyciu parametru –indep-pairwise 200 25 0,4, co dało nam 282 184 SNP. Przeprowadziliśmy analizę ADMIXTURE dla wartości k między 2 a 15, wykonując 5 powtórzeń przy każdej wartości k i zachowując powtórzenie o najwyższym prawdopodobieństwie przy każdym k (rysunki S2 i S3). Wykonaliśmy analizy qpWave11,12/qpAdm11 z domyślnymi parametrami i allsnps: TAK, wstępnie obliczając statystyki f przy użyciu qpfstats (https://github.com/DReichLab/AdmixTools/blob/master/qpfs.pdf). Wszystkie narzędzia są zaimplementowane ….
6. Lazer, E. ∙ Welch, K. ∙ Vu, D. … Wewnątrz odlewów ofiar Pompejów: Wyniki z pierwszego sezonu Pompejańskiego Projektu Obsad w 2015 r. Pap. Br. Sch. Rzym. 2021; 89 ….